探讨双抗原夹心法检测HIV抗体的影响因素论文_路娜

探讨双抗原夹心法检测HIV抗体的影响因素论文_路娜

(广西省来宾市金秀县人民医院 广西 来宾 545700)

【摘要】 目的:探讨双抗原夹心法检测HIV抗体的影响因素。方法:以双抗原夹心法对HIV抗体进行检测,分析在不同血清、不同孵育方式、不同血清量、不同孵育时间及显色终止后不同时间段比色对测定结果造成的影响。结果:对HIV抗体的影响因素主要包括不同血清量、不同孵育时间及加终止液后不同时间段比色。结论:双抗原夹心法检测HIV抗体时的主要影响因素包括血清量减少、孵育时间缩短及加终止液后的比色时间延长等。

【关键词】 双抗原夹心法;HIV抗体;影响因素

【中图分类号】R37 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2016)01-0149-02

艾滋病又称为获得性免疫缺陷综合征,该病由免疫缺陷病毒引起,临床上以特异性HIV抗体诊断作为HIV感染的主要依据[1-2]。在本次调查中我院旨在重点分析双抗原夹心法检测HIV抗体的影响因素。现报告如下。

1.材料与方法

1.1 试剂与仪器

试剂:HIV抗体第三代(双抗原夹心法)诊断试剂盒,HIV抗体质控血清,由北京万泰有限公司生产提供。仪器:RT-6100酶标分析仪,RT—300自动洗板机,Hw1型电热恒温水浴箱。

1.2 方法

1.2.1样品来源:阴性抗体来源于健康体检者,阳性抗体来自于我市疾控中心,并经灭活处理。

1.2.2非溶血、溶血稀释样品的制备:取HIV阴性样品,处理后分离非溶血血清与溶血血清,后用该血清对HIV抗体阳性血清进行倍比稀释,测定溶血样品Hb浓度,同时对非溶血样品与溶血样品的相关情况进行比较。

1.2.3非脂浊、脂浊稀释样品的制备:取HIV阴性样品,处理后得到非脂浊、脂浊血清,后用该血清对HIV抗体阳性血清进行倍比稀释,测定各样品TG含量,同时对非脂浊、脂浊稀释样品的相关情况进行比较。

1.2.4 HIV抗体阳性样品的制备:取若干HIV阴性样品,离心分离血清,后于各血清内加入不同量的HIV抗体阳性血清,稀释成不同浓度的HIV抗体阳性样品。对各样品进行不同方式的孵育、不同血清量比较、不同孵育时间比较与显色终止后不同时间段比色比较。

1.3 统计学处理

本次所得数据以SPSS14.0统计学软件进行分析处理,计数资料采用卡方检验,计量资料采用均数_+标准差表示,以P<0.05差异具有统计学意义。

期刊文章分类查询,尽在期刊图书馆

2.结果

2.1 非溶血样品与溶血样品比较

由结果可知,非溶血样品与溶血样品倍比稀释后的HIV抗体A值配对t检验比较差异无统计学意义(P>0.05)。

2.2 非脂浊与脂浊样品的比较

由结果可知,非脂浊与脂浊样品倍比稀释后的HIV抗体A值配对t检验比较差异无统计学意义(P>0.05)。

2.3 不同孵育方式对HIV抗体检测的影响

选取12份HIV抗体阳性样品,每份平行测定2孔。其中一份经水浴箱内培养,另一份经培养箱内培养,两组样品其余各培养条件均相同。由结果可知,两组A值配对t检验比较差异无统计学意义(P>0.05)。

2.4 不同血清量和不同孵育时间对HIV抗体检测的影响

选取30份HIV抗体阳性样品,每份平行测定2孔。一组(正常组)血清100μl,孵育30min,一组(对比1组)血清50μl,孵育30min;一组(对比2组)血清100μl,孵育20min。三组样品其余培养条件均相同,由结果可知,正常组与对比1组进行A值配对t检验比较差异有统计学意义(P<0.05),正常组与对比2组进行A值配对t检验比较差异有统计学意义(P<0.05)。

2.5 加终止液后不同时间段比色A值比较

挑选出A值在0.074~3.001之间的样品60份,加入终止液后在不同时间段比色,进行A值测定,配对t检验,由结果可知,立即比色与比色5min比较差异无统计学意义(P>0.05),其余10min、15min、20min、25min、30min比较差异有统计学意义(P<0.05) 。

3.讨论

在本次调查中,溶血实验对结果造成的影响主要在于红细胞溶血后,其所释放的游离Hb具有过氧化物酶的活性,可吸附于反应孔上,进而使得检验结果呈假阳性。在抗体阳性非溶血与溶血稀释样品中,当其比例为1:32时,A值并未出现明显变化,这可能因酶标反应板孔包被物的浓度是一个相对的定值有关。脂浊对实验结果造成的影响主要在于脂浊可增大血清黏度,减慢分子运动速度,进而使得抗原抗体结合几率减慢,干扰测定结果。本次调查提示,一定程度的脂浊对检验结果未造成明显影响。不同孵育方式也未对结果造成显著影响,其主要因为抗原抗体反应在一定时间与温度下可达到反应平衡点,但笔者仍建议行水浴孵育,以保证反应温度达到平衡状态。

结果显示血清量的多少及孵育时间长短可对检验结果造成较大影响。其中血清量减少或温育时间降低均可降低A值。由本次调查结果可知,加入终止液后,避光保存反应板可减慢A值下降速度,因此在实验过程中需对其进行特殊保存[3]。

综上所述,若需排除其他干扰因素对HIV抗体检测质量造成的影响,可选择灵敏度较高的试剂,遵循基本操作原则,健全HIV抗体检测质量保证体系。

【参考文献】

[1] Lee SJ, Newton PN. Use of the correlation coefficient to compare a point-of-care antigen test against a quantitativesandwich enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of cryptococcal meningitis[J].Clin Infect Dis. 2012 Dec;55(12):1744-5; author reply 1745-6.

[2] 张桂芳.双抗原夹心法检测HIV抗体影响因素研究[J].现代检验医学杂志,2010,25(3):115-116.

[3] 中国疾病预防控制中心.全国艾滋病检测技术规范[J].中国药物依赖性杂志,2004,13(4):318.

论文作者:路娜

论文发表刊物:《医药前沿》2016年1月第1期

论文发表时间:2016/5/12

标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  

探讨双抗原夹心法检测HIV抗体的影响因素论文_路娜
下载Doc文档

猜你喜欢