艾海新[1]2004年在《栉孔扇贝急性病毒性坏死症病毒基因克隆及核酸诊断技术的建立》文中提出自1997年以来山东沿海暴发栉孔扇贝(Chlamys farreri)大规模死亡现象，给我国贝类养殖业造成了巨大的损失，通过流行病学调查、病理学分析和人工感染实验已经证实是由栉孔扇贝急性病毒性坏死症病毒(AVNV)造成的。本研究利用差速离心和蔗糖密度梯度离心分离纯化AVNV后，用蛋白酶K裂解法抽提AVNV核酸，并对AVNV核酸特性进行了基本分析，结果显示AVNV是单链不分节段的RNA病毒。采用随机引物和Oligo(dT)双引物法，用SuperScript Ⅱ反转录酶合成cDNA，并克隆到pUC118质粒上，构建了AVNV核酸的部分cDNA文库，通过蓝白斑显色、PCR反应和酶切分析相结合筛选阳性重组子，测定了重组cDNA克隆的部分序列并进行了序列分析，最终从中筛选出23#、52#特异重组cDNA克隆。 在23#、52#重组质粒基础上，设计2对特异性引物，预计目的产物分别为406bp和412bp，开展了AVNV的RT-PCR检测技术的研究，建立了一种快速、准确、灵敏的AVNV RT-PCR检测方法，本方法具有较高的灵敏度和较强的特异性，以P23F、P23R为特异性引物的RT-PCR检测AVNV RNA的检出灵敏度为1pg，以P52F、P52R为特异性引物的RT-PCR检测AVNV RNA的检出灵敏度为100pg，与栉孔扇贝闭壳肌基因组DNA无交叉反应。 利用非放射性标记物地高辛(DIG)，分别以23#质粒DNA为模板，P23F、P23R为引物和以52#质粒DNA为模板，P52F、P52R为引物通过PCR法制备了23#、52#AVNV的cDNA探针，探针长度分别为406bp和412bp，标记产量分别约为60ng／μL和40ng／μL。通过核酸探针斑点杂交检测法对探针特异性和灵敏度进行验证，结果表明，23#、52#探针都具有较高的灵敏度和较强的特异性，分别检测AVNV RNA的检出灵敏度为6.1pg和610pg，与栉孔扇贝闭壳肌基因组DNA无交叉反应。利用该法检测栉孔扇贝样品，结果显示栉孔扇贝的外套、鳃、肾、消化腺都显示阳性杂交信号，生殖腺、闭壳肌未显示杂交信号。 本研究所建立的AVNV的RT-PCR检测方法和PCR法制备DIG标记探针的斑点杂交检测方法是2种快速、灵敏和特异的检测AVNV的方法，发展和完善这2种技术对栉孔扇贝急性病毒性坏死症的早期诊断和防治及抗病育种具有重要意义。
任伟成[2]2009年在《栉孔扇贝急性病毒性坏死病毒基因组全序列的测定和核酸诊断技术的研究》文中认为栉孔扇贝(Chlamys farreri)作为我国北方沿海特有的优良养殖贝类，形成规模化养殖已有20多年的历史，给我国北方沿海地区带来了巨大的经济效益，在我国海水养殖业中占有重要的地位。自20世纪90年代以来，栉孔扇贝的大规模死亡在我国北方养殖海区连年暴发(累积死亡率高达90％以上)，已给栉孔扇贝养殖业造成了巨大的经济损失，并严重阻碍了这一产业的持续发展。急性病毒性坏死病毒(Acute Viral Necrobiotic Virus，AVNV)，是引起我国北方沿海养殖栉孔扇贝夏季大规模死亡(急性病毒性坏死症)(Acute ViralNecrobiotic Disease，AVND)的病原。该病毒主要在扇贝的消化腺、外套膜、肾脏和肠等的结缔组织细胞和间质细胞中发现，病毒呈球形，直径大小为130～170nm，核衣壳直径为90～140nm，囊膜厚度为5～10nm，外具放射状纤突，纤突长度约为20nm，病毒核衣壳与囊膜间有10～16nm的透明间隙，病毒核心区电子密度较高。这些形态学方面的特征与此前国外报道的感染牡蛎等双壳贝类的牡蛎疱疹病毒(Ostreid Herpesvirus 1，OsHV-1)很相似。首先应用扩增OsHV-1核酸序列的引物(A3／A4、C2／C6和Gp3／Gp4)，以AVNV核酸为模板进行了PCR扩增，得到了部分AVNV的基因序列。序列分析结果显示，AVNV和OsHV-1在A3／A4、C2／C6和Gp3／Gp4片段的核苷酸相似性分别达到了99％、96％和99％，说明AVNV和OsHV-1在核苷酸水平具有很大的相似性。根据这些已有的核苷酸序列和已经公布的OsHV-1的全基因组序列(GeneBank号为AY509253)设计PCR引物，运用PCR扩增和分子克隆等技术，建立了一系列末端相互重迭的克隆，覆盖整个AVNV的基因组，对这些克隆进行了测序和拼接，完成了AVNV基因组核苷酸序列的测定(GeneBank号：GQ153938)。AVNV基因组全长210，993bp，A和T含量丰富，占61．5％。分析发现，AVNV基因组的两个末端存在较大的反向重复序列(1～7，638和178，052～185，689，187，200～197，411和200，782～210，993)，符合疱疹病毒基因组的基本特征。预测AVNV基因组中含有123个潜在的开放阅读框(Open Reading Frames，ORF)，编码从41个氨基酸残基至1878个氨基酸残基的蛋白质。通过与GeneBank／EMBL／DDBJ数据库中的核酸和蛋白质序列的同源性分析发现，AVNV中有44个ORF具有一定的结构和功能，且与其它类群的核酸或蛋白质氨基酸序列具有显着的同源性。其功能与病毒DNA复制、核酸代谢、修饰以及病毒与宿主相互作用等有关，如DNA聚合酶(DNA polymerase)(ORF99)、解旋酶SF2 helicase(ORF66)、引物酶(Primase) (ORF24)、ATPase subunit of DNA-packagingterminase(ORF108)、核糖核苷酸还原酶小亚基(Ribonucleotide reductase smallsubunit) (ORF20)、核糖核苷酸还原酶大亚基(Ribonucleotide reductase largesubunit)(ORF50)、dUTP酶(deoxyuridine triphosphatase，dUTPase)(ORF 27、ORF 33和ORF74)等。对这些主要基因的密码子偏爱性、结构域、同源性和蛋白质二级结构进行了分析，推测了它们可能的功能。分析了AVNV和其它贝类疱疹病毒(主要是OsHV-1)的关系，发现AVNV和OsHV-1的29个ORF编码的蛋白质氨基酸具有100％的同源性，3个具有81～90％的同源性，8个具有40～80％的同源性。对AVNV的分类地位进行了探讨，尽管AVNV和OsHV-1在分子水平的相似程度非常高，二者的亲缘关系很近，但是二者在基因组大小和ORF编码蛋白质的同源性方面存在较大的差异，结合二者在宿主范围、地理分布和流行病学等方面的不同，认为AVNV是疱疹病毒目中Malacoherpesviridae下的一个新种。在完成AVNV基因组全序列的测定和分析的基础上，针对不同样品分析的要求，建立了AVNV PCR检测方法、巢式PCR检测方法、环介导等温扩增(LAMP)检测方法和荧光实时定量PCR检测方法，为该疾病的快速诊断、致病机理的探讨、分子流行病学调查和传播途径的调查以及预警监测体系的建立提供了重要的技术保障。PCR检测方法和巢式PCR检测方法，应用Primer premier 5．0设计了一步PCR引物和巢式PCR引物，预计扩增产物大小分别为706bp和314bp。对反应条件进行了优化，该两种检测方法的灵敏度分别为100fg和1fg的AVNV核酸，特异性实验表明该两对引物只与AVNV发生阳性反应，和扇贝组织DNA以及其它水生生物病毒均无交叉反应。该方法灵敏度高、特异性好且可以直接对PCR产物进行测序确认，适合在实验室内对大批量样品进行检测。环介导等温扩增(LAMP)检测方法，应用http：／／primerexplorer．jp／e／在线软件PrimerExplorer V4设计LAMP引物，其中包括两对外引物AVNV-F3和AVNV-B3，两对内引物AVNV-FIP和AVNV-BIP(引物AVNV-FIP由F2、TTTT连接子和F1c组成，引物AVNV-BIP由B1c、TTTT连接子和B2组成)。对反应条件进行了优化，当反应混合物在64℃孵育60min时，LAMP方法能用于检测AVNV，最低检测灵敏度达到了1fg的AVNV核酸，而且扩增产物可以通过肉眼直接观察，不需要PCR仪和电泳仪等设备。LAMP是一种操作简单、灵敏度高和特异性好的检测方法，在AVNV的简便、快速检测方面具有重要的应用前景。荧光实时定量PCR检测方法，根据AVNV基因序列，应用Beacon Designer7．0设计了一对能特异性扩增90bp片段的引物和TaqMan探针，并对反应条件进行了优化。该方法在10~8～10~2病毒拷贝范围内有较好的线性关系，AVNV拷贝数(X)和循环数(C_t)的相关关系为：lgX=-0．29C_t+13．28(相关系数R~2=0．998)，检测AVNV的最低灵敏度为10~2病毒拷贝，特异性实验表明只对AVNV基因组呈阳性反应。该方法可以检测到组织中极微量AVNV核酸，且可以进行定量分析，为研究AVNV的动态变化、病毒载量与AVND暴发的相关性、疾病暴发前病毒的危险临界值以及病毒致病机理等方面的研究提供有力的工具。
王崇明, 艾海新, 王秀华, 李赟, 宋微波[3]2007年在《栉孔扇贝急性病毒性坏死症核酸诊断技术》文中研究说明"急性病毒性坏死病毒"(Acute Viral Necmbiotic Disease,AVNV)已被证实是一种对养殖栉孔扇贝造成极大危害的病员体。目前,在养殖生产实践中迫切需要建立一种快速、准确、灵敏的检测和诊断方法。与传统诊断方法相比,RT-PCR 检测技术具有灵敏度高、特异性强、操作简便和快速等特点,是诊断病原体的一种有效的现代分子生物学技术。作者已经开展了栉孔扇贝(Chlamys farreri)急性病毒性坏死病毒基因克隆的研究,建立了 AVNV 的部分 cDNA 文库,获得了13#、52#重组质粒的序列。设计合成了2对特异性引物,预计目的产物分别为406bp 和412bp,开展了 AVNV 的 RT-PCR 检测技术的研究,建立了一种快速、准确、灵敏的 AVNV RT-PCR 检测方法,本方法具有较高的灵敏度和较强的特异性,以 P13F/P13R 为特异性引物的 RT-PCR 检测 AVNV RNA 的检出灵敏度为1pg,以 P52F/P52R 为特异性引物的 RT-PCR 检测 AVNV RNA 的检出灵敏度为100pg,与栉孔扇贝闭壳肌基因组 DNA 无交叉反应。利用非放射性标记物地高辛(DIG),通过 PCR 法制备了13#、52#AVNV 的 cDNA 探针,探针长度分别为406bp 和412bp,标记产量分别约为60ng/μL和40ng/μL。通过核酸探针斑点杂交检测法对探针特异性和灵敏度进行验证,结果表明,13#、52#探针都具有较高的灵敏度和较强的特异性,分别检测 AVNV RNA 的检出灵敏度为6.1pg和610pg, 与栉孔扇贝闭壳肌基因组 DNA 无交叉反应。利用该法检测栉孔扇贝样品,结果显示栉孔扇贝的外套、鳃、肾、消化腺都显示阳性杂交信号,生殖腺、闭壳肌未显示杂交信号。
王崇明, 艾海新, 刘英杰, 王秀华, 李赟[4]2006年在《栉孔扇贝急性病毒性坏死症病毒cDNA文库的构建及部分序列分析》文中研究表明急性病毒性坏死症病毒(Acute Virus Necrobiotic Virus,AVNV)已被证实是一种对养殖栉孔扇贝(Chlamys farreri)危害极大的致病病原。本研究应用基因克隆技术对AVNV基因组进行cDNA合成、克隆,并对部分克隆进行序列分析。采用差速和蔗糖密度梯度离心法,分离纯化AVNV。用Trizol试剂抽提病毒RNA,采用随机引物和Oligo(dT)双引物法,SuperScriptⅡ反转录酶合成cDNA,并克隆于pUC118质粒上,利用蓝白斑筛选阳性克隆子,PCR法快速鉴定重组质粒。经筛选得到2个阳性克隆23#、52#,插入片段大小约为1 200 bp和800 bp。测序结果与GenBank的比对分析显示,尚未有类似的序列报道,提示该病毒可能为一种新发现的病毒。
参考文献：
[1]. 栉孔扇贝急性病毒性坏死症病毒基因克隆及核酸诊断技术的建立[D]. 艾海新. 中国海洋大学. 2004
[2]. 栉孔扇贝急性病毒性坏死病毒基因组全序列的测定和核酸诊断技术的研究[D]. 任伟成. 中国海洋大学. 2009
[3]. 栉孔扇贝急性病毒性坏死症核酸诊断技术[C]. 王崇明, 艾海新, 王秀华, 李赟, 宋微波. 中国动物学会、中国海洋湖沼学会贝类学分会第八次会员代表大会暨第十叁次全国贝类学术讨论会论文摘要集. 2007
[4]. 栉孔扇贝急性病毒性坏死症病毒cDNA文库的构建及部分序列分析[J]. 王崇明, 艾海新, 刘英杰, 王秀华, 李赟. 中国水产科学. 2006
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