高亭1 蒋引娣2 何小鹏1 张红英3(通讯作者) 谢军平4
(1.咸阳市中心医院呼吸与危重症医学科 712000)
(2.咸阳市中心医院血液内科 712000)
(3.陕西中医药大学第二附属医院 712000)
(4.南昌大学第二附属医院呼吸内科 330006)
【摘 要】目的:观察羟基红花黄色素A(hdroxysafflor yellow A,HSYA)对小鼠C57BL/6 Lewis肺癌移植瘤组织中微血管(MVD)表达影响。方法:C57BL/6近交系小鼠30只,造模后随机分为5组,每组6只,分别使用灭菌用水;环磷酰胺;HSYA高、中、低浓度组(1.4、0.7、0.35mg/kg)作用于小鼠模型,于造模第22天后处死所有小鼠,用CD31对肿瘤组织进行免疫组化染色,观察微血管生成情况。结果:HSYA中、低浓度组与CTX组微血管形成分别为22.63±3.82、18.46±2.81、13.56±2.96低于对照组34.82±3.94以及HSYA高浓度组32.32±2.76,差异具有统计学意义。结论:HSYA能够抑制Lewis肺癌移植瘤生长,与降低肿瘤微血管生成有关。
【中图分类号】R284.2 【文献标识码】B 【文章编号】1003-5028(2015)8-0707-02
肺癌作为当今世界发病率最高的肿瘤,其死亡率呈逐年上升的趋势。羟基红黄色素A(hydroxysafflor yellow A,HSYA)是红花发挥主要药理作用的成分之一。前期通过动物实验证明[1]低浓度HSYA能够抑制肺癌移植瘤中血管内皮生长因子(Vascular endothelial growth factor,VEGF)的表达,从而抑制肺癌移植瘤的生长。在此基础上本研究组通过进一步实验,观察HSYA对肿瘤组织中微血管密度的影响作用,进一步说明HSYA对肿瘤血管的抑制情况。
1 材料与方法
1.1 动物及细胞株 C57/BL雄性小鼠30只,体重(20±2)g,购自陕西农林科技大学动物中心,饲养于咸阳市中心医院动物中心清洁级动物房;Lewis肺癌细胞株购自中国科学院上海实验动物中心。
1.2药物 HSYA标准品购自上海顺勃生物工程技术有限公司,纯度≥98.4%;环磷酰胺(CTX)购自江苏恒瑞股份有限公司,200mg/支;CD31一抗:即用型,购自武汉博士德生物工程有限公司。
1.3实验方法
1.3.1 Lewis肺癌细胞培养 用含有10%胎牛血清及DMEM的培养基进行Lewis肺癌细胞培养,至于37.0℃、5%CO2 孵箱中进行培养,每2天更换1次培养基,并用0.25%胰蛋白酶消化后进行传代。
1.3.2 药物配制 CTX用灭菌注射用水配制成2g/L溶液;HSYA标准品,用灭菌用水配制成28mg/L、56mg/L、112mg/L溶液,并用0.22μm微孔滤膜滤过除菌,无菌分装后避光储存于-20℃冰箱中。
1.3.3动物造模 待Lewis肺癌细胞株传代足够数量后,取处于对数生长期细胞,用0.25%胰蛋白酶消化后在倒置显微镜下技术,观察活力>95%,调整浓度至1×107/mL细胞悬液,按0.2ml/只接种于C57/BL小鼠侧肋腹皮下,复制小鼠Lewis肺癌移植瘤模型。
1.3.4 动物分组及给药 在造模24h小时后,将所有所有小鼠采用计算机随机数字编排分为5组,每组6只;分别为灭菌用水组(对照组);CTX组;HSYA高、中、低浓度组(1.4、0.7、0.35mg/kg)。在造模后第2天开始,对HSYA高、中、低浓度组腹腔注射药物(2d/次);对照组给予腹腔注射灭菌注射用水(2次/d);CTX组于造模后第2天按25mg/kg给予腹腔注射(1次/2d)。
1.4观察指标
肿瘤微血管密度(MVD)判断采用Weidner法进行计算[2],先低倍镜下(×100)下选取微血管最丰富的区域,避开肿瘤坏死区及出血区,然后在高倍镜(×400)计算该区域视野的微血管数目,计数5个视野的微血管术,取平均值作为该肿瘤的MVD。
1.5统计学分析 采用SPSS 17.0软件进行数据分析,MVD采用ONE-WAY ANOVA检验。p<0.05有统计学意义。
2 结果
2.1HSYA对小鼠Lewis肺癌移植瘤MVD的影响 观察移植瘤组织切片,可见肿瘤微血管内皮细胞被染成黄棕色。HSYA中、低浓度组与CTX组微血管形成分别为22.63±3.82、18.46±2.81、13.56±2.96低于对照组34.82±3.94以及HSYA高浓度组32.32±2.76,差异具有统计学意义。(详见表一)
3 讨论
肿瘤微血管密度不但能够为肿瘤提供营养支持及供给氧需,而且是反映肿瘤血管生成的一个重要指标,与VEGF共同反映了肿瘤的转移及侵润能力[3-4]。肿瘤在没有血供的情况下直径生长不超过2mm[5],新生血管的生成同肿瘤的生成及预后有密切关系。有研究显示[6],肺癌患者中VEGF表达显著高于健康人群,而VEGF阳性表达者的MVD计数显著高于阴性者,MVD作为衡量肿瘤血管生成的重要量化指标,与肿瘤大小及侵润程度密切相关。CD31是一种重要的内皮细胞标记物,由于其在恶性肿瘤中的表达反应肿瘤血管生成情况,故常被用于标记MVD。
肺癌是目前主要的恶性肿瘤之一,且逐渐成为恶性肿瘤相关性死亡的首位,但晚期肺癌治疗效果均不佳。近年来许多抑制肿瘤血管生成的药物应用于临床,本研究人员通过既往研究发现低浓度HSYA可有效抑制肺癌移植瘤中VEGF表达,从而达到抑制肿瘤生长的目的,本实验进一步通过检测MVD表达发现,HSYA低浓度、中浓度可有效抑制MVD表达,进一步证明低浓度HSYA能够抑制肿瘤血管生成,发挥抗肿瘤作用。
综上所述,HSYA能够降低Lewis肺癌移植瘤中MVD表达,进而抑制肿瘤新生血管的生成,最终达到抑制肿瘤的生长的目的,但是HSYA是否可同时抑制其他血管生成因子的表达,仍需进一步研究。
参考文献:
[1]谢军平;高亭;李环羽;段凤英.羟基红花黄色素A对小鼠Lewis肺癌移植瘤的抑制作用及VEGF表达的影响.广东医学,2014,35(1):36-38.
[2]Foote RL,Weidner N, Harris J, et al. Evaluation of tumor angiogen-esis measured with microvessel density ( MVD)as a prognostic in-dicator in nasopharyngeal carcinoma: results of RTOG 9505[J]. Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2005, 61( 3) : 745-753.
[3]Toi M, Kondo S,Suzuki H et al.Qauntitative analysis of vascular endothelial growth factor in Primary breast cancer[J].Cancer,1996,77( 6):1101-1106.
[4]Takigawa N, Segawa Y, Fujimoto N et al. Elevated vascular endo-thelial growth factor levels in sera of Patients with lung cancer[J]. Anticancer Res,1998,18(28):1251-1254.
[5]BHAT T A,SINGH R P.Tumor angiogenesis a potential tar- get in cancer chemoprevention[J].Food Chem Toxico,2008,46(4):1334-1345.
[6]McDonnellCO, Hill ADK, McNamara DA, et al.Tumor microe- tastases: The influence of angiogenesis[J].Euro J Surg On col,2000,26(2):105-115.
研究项目:
陕西省教育厅科学研究项目(项目编号:14JK1208)
论文作者:高亭1,蒋引娣2,何小鹏1,张红英3(通讯作者),谢
论文发表刊物:《河南中医》2015年8月
论文发表时间:2016/6/2
标签:肿瘤论文; 肺癌论文; 微血管论文; 小鼠论文; 抑制论文; 血管论文; 黄色素论文; 《河南中医》2015年8月论文;