丁永前[1]2000年在《组培苗微生态环境中CO_2控制的研究》文中认为为了研究CO_2在组培过程中的作用，探索组培过程中实现无（少）糖培养的可能性，设计并制作了CO_2实时监控系统。该系统由培养箱、微机系统、监控设备和气源组件等四个部分组成，并设计了一套监控软件。利用该系统可将组培环境中的CO_2浓度控制在设定的范围内，可以使组培苗生长在无糖、CO_2富集、高光合光量子流和无菌的环境中。 本文对传统组培环境中的CO_2浓度进行了测定，模拟出了其在一天中的变化曲线，发现传统组培方式下栽培的组培苗具有很强的光合作用能力，在光照后不久（一个小时内），小瓶内CO_2浓度迅速下降到补偿点，此后，组培苗在整个光照期内处于CO_2“饥饿”状态。 在侧向光照为65μmol·m~(-2)·s~(-1)（光合光量子流密度，PPFD）、顶部光照为12μmol·m~(-2)·s~(-1)、底部光照为43μmol·m~(-2)·s~(-1)，光照期为12小时/天，温度为25℃的条件下，利用CO_2实时监控系统对葡萄（“赤霞珠”）继代组培苗增施不同浓度范围（600ppm～1000ppm、800ppm～1200ppm、1000ppm～1500ppm）的CO_2，与传统组培方式进行了为期20～30天的三次对比实验，每种培养方式都分有糖（10g/l）和无糖两组。实验结果表明，通过本系统增施CO_2进行光合自养（无糖培养，组1）和光合兼养（有糖培养，组2）的葡萄苗，叶面积的平均增长率分别为90.0％和140.9％，茎粗增长率分别为76.6％和79.7％，枝高增长率分别为62.8％和44.2％；传统组培方式下，无糖培养（组3）和有糖培养（组4）叶面积平均增长率分别为53.8％和197.1％，茎粗的平均增长率分别为1.6％和39.1％，枝高增长率分别为30.2％和100.3％。组2的平均干物重是组1的1.7倍，组3的6.6倍，组4的2.8倍。这表明，增施CO_2培育出的葡萄组培苗，尤其是有糖培养，具有更明显的利于驯化的优良性状：茎体粗壮、节间距短、根系发达、干物重积累多。同时，通过茎部的显微切片观察表明，增施CO_2培育出的组培苗整体发育提前显著。 研究结果表明：该CO_2实时监控系统能够实现组培苗的无糖培养（光合自养），通过增施CO_2进行无（低）糖培养比传统组培方式有明显的优越性。
吴沿友, 刘建, 李国祥, 夏利利, 李西腾[2]2006年在《植物组织培养育苗微生态环境控制的研究进展》文中进行了进一步梳理分析了传统植物组织培养设施与环境的诸多问题和缺陷,综述了国内外组培微环境单因子和多因子控制的研究进展,并提出了组培育苗微生态环境控制的发展趋势与建议。
参考文献：
[1]. 组培苗微生态环境中CO_2控制的研究[D]. 丁永前. 南京农业大学. 2000
[2]. 植物组织培养育苗微生态环境控制的研究进展[J]. 吴沿友, 刘建, 李国祥, 夏利利, 李西腾. 江苏农业科学. 2006
本文来源: https://www.lw33.cn/article/91aaf7f5d879b5a7dff6ef03.html